21 de abr. de 2010

CONHECENDO O LAC / HVU

O Hospital Veterinário de Uberaba – HVU possui um setor especializado em realizar mais diversos exames laboratoriais que atendem o corpo clínico mas também a comunidade externa da região de Uberaba-MG, este setor é Laboratório de Análises Clínicas – LAC, sob a responsabilidade da Médica Veterinária Camila Cristina da Silva.

O hemograma é um dos muitos exames que compões a grade de rotina do LAC. Na aula da Prof.ª Joely F. F. Bittar, nos temos que realizar a contagem das hemácias, realizar o hematócrito e a contagem diferencial da série brancas. No entanto, o LAC devido ao grande fluxo de exames não pode realizar todos os exames manualmente, por isso utiliza a contagem automatizada, com nosso coleguinha Abbreviated Blood Counter Vet, ou simplesmente ABC Vet (À esquerda fig. 1 – ABC Vet).

abc

O ABC Vet como gosta de ser chamado analisa sangue de 11 diferentes espécies de animais, graças aos seus Smart Cards para cada espécie animal, que possui tanto as definições relevantes de análise e os valores de referência (Centralizada fig. 2 – Smart Cards, ferramentas de trabalho do ABC).

Os animais atendidos são dividos em seguintes categorias:

STANDART: cão, gato e cavalo.

COMPANION ANIMALS: coelho e furão.

BREED ANIMALS ou EXPLORATION ANIMALS: bovinos, suínos e pequenos ruminantes.

LAB. ANIMALS: ratos e macacos.

empresa DI 1 029

Ao contrário de nós, o ABC é altamente economista, com apenas 12 μl de sangue total com EDTA, sem precisar de preparações especiais ou diluições ele consegui realizar a contagem sanguínea, incluindo os seguintes parâmetros: hemácias, plaquetas, leucócitos totais, hemoglobina e índices hematimétricos, sem necessidade de lâminas, lamínulas ou Neubauer´s.

Além disso, ABC se revela um excelente contador diferencial diferenciação dos leucócitos totais em termos de linfócitos, monócitos e granulócitos, somente para cães, gatos, equinos, coelhos e furões. A chamada bandeira EOS é um indicador de eosinófilos levantadas na amostra de sangue.

O ABC utiliza a impedância elétrica e a espectrofotometria para realizar suas analises, sendo a primeira uma leitura realizada através da passagem de uma corrente elétrica por um determinado substrato biológico que podem ou não se opor a esta transmissão elétrica. Já a espectrofotometria é um método óptico que compara a quantidade de luz transmitida ou absorvida de um determinado substrato biológico dissolvido em um soluto de espectrofotometria conhecida.

empresa DI 1 031 Na figura 3 (ao lado) pode-se ver o painel de leitura do ABC, e ele não é preguiçoso, dedicado realiza a análise em apenas 90 segundos.

Conectado ao computador pode emitir relatórios dos resultados, conforme fig. 4.

Mas o ABC não gosta de trabalhar sozinho, ele adora compor um time, então se não for bem regulado pelo técnico de laboratório, ele não garantirá a confiabilidade dos dados. No LAC, além da contagem automática para agilizar os trabalhos da rotina, são realizados manualmente o hematócrito e contagem diferencial dos leucócitos para garantir a confiabilidade dos dados, através de repetibilidade, conforme o Protocolo Operacional Padrão – POP do LAC.

FIG. 4 – Resultados do ABC Vet FONTE: SCIL (2010).

O nosso operador amigável necessita de cuidados diária com seu pack de reagente, que ele não dispensa pois só assim garantirá resultados comprovadamente fiáveis tanto em animais sadios quando nos doentes.

Quem quiser conhecer pessoalmente este profissional é só dar uma passadinha no LAC que ele terá um prazer imenso em demonstrar sua capacidade para realizar este serviço.

FONTE: SCIL. Scil Vet ABC. S.l: Scil, 2010. Disponível em: <http://www.scilvet.com/scilgeneral/Products/Hematology/scil_Vet_abc-p-5/Overview-p-6.html> Acesso em: 21 de abril de 2010.

Resposta 1º ESTUDO DIRIGIDO

1) Podemos descobrir os valores de Hemoglobina e Hemácias à partir do Hematócrito dividindo por 3 e por 6, respectivamente. Porque isso não é aconselhável?

R: Porque podemos ter um índice falso já que nivelamos os níveis de Hg e He ao valor do hematócrito correspondente, obtendo por muita das vezes valores de normalidade.

2) O que é hematócrito e como ele é dividido?

R: Segundo Samuelson (2007) Hematócrito é os elementos figurados do sangue tratados previamente com anticoagulante e centrifugados, que formam as duas camadas mais baixas no tubo, sendo a camada mais baixa, maior, viscosa e vermelha, composta pelas células vermelhas do sangue. A camada intermediária chamada de camada leucocitária, ou buffy coat, de espessura fina e de cor branca acinzentada, compostas pelas células brancas e pelas plaquetas, representando, aproximadamente 1% do volume total de sangue. O plasma compõe a última camada, o qual tem coloração amarelada, e que compreende 55 – 60% do volume total do sangue (Fig. 1).

Fig. 1 – Ilustração de sangue com anticoagulante que foi separado por centrifugação em três camadas.

hmtFONTE: SAMUELSON, D. A. Tratado de histologia veterinária. cap. 7. p. 125-126. fig. 7-1. ELSEVIER: Rio de Janeiro, 2007.

3) Qual a influência das catecolaminas nos aumentos dos valores de hematócrito e hemoglobina?

R: As catecolaminas causam uma contração esplênica, injetando um volume concentrado de hematócrito na circulação periférica, tendo uma influência direta sobre o hematócrito. Quanto a hemoglobina, o efeito é indireto já que sua concentração e a contagem de hemácias são padronizadas ao valor do hematócrito, são paralelo dependentes a influência das catecolaminas (MEYER et al, 1995).

4) Qual é o fator sérico para produção de hemácias no sangue?

R: O fator sérico é a baixa concentração de O2 ou a alta concentração de CO2 que estimulam a liberação de eritropoietina fisiologicamente apropriado. Um exemplo disso é quando o organismo sofre com uma doença pulmonar que prejudica a troca gasosa, ou quando o organismo é fica em condições de baixa concentração de O2 atmosférico.

5) Defina:

a) reticulócitos: São hemácias jovens anucleadas, com a presença de uma malha reticular, de RNA ribossômico, mecanismos de síntese protéica, incluindo ribossomos, retículo endoplasmático rugoso (RER) e mitocôndrias. Em certos casos de atividade eritropoética aumentada, tais células são observadas com maior frequência e podem servir como um indicador do aumento na produção de hemácias. Não encontrados em equinos, ovinos, caprinos e bovinos saudáveis. Em gatos e cães, no em quantidade de 0,5 a 1,0% podem estar presentes, e em 2% nos suínos.

FONTE: Ciência News (2010).

b) policitemia: Consiste no aumento da massa de eritrócitos, hemoglobina e hematócrito, acompanhado de um aumento do volume sangüíneo total. O quadro deve ser diferenciado da eritrocitose secundária à perda ou baixa ingestão de líquidos ou a um estímulo mieloproliferativo.

FONTE: Ciência News (2010).

c) anisocitose: variação no tamanho dos eritrócitos (heterogeneidade).

FONTE: WEB ARTIGOS (2010).

d) policromasia: variação na coloração dos eritrócitos num mesmo esfregaço de sangue.

FONTE: Portal Veterinária (2009).

6) Para cada tipo de exame utilizamos um tipo de tubo que tem tampa e conteúdo diferentes, então determine o uso e conteúdo de cada tubo:

a) tampa amarela: Tubo com gel separador e ativador de coágulo que serve para exames bioquímicos e sorológicos.

b) tampa vermelha: Sem anticoagulante, serva para análises ao soro sanguíneo sendo utilizados para provas sorológicas e bioquímicas.

c) tampa roxa: Possui EDTA, que sequestra o Ca e impede a coagulação é utilizado para hematologia. Quando o tubo possui gel separador é utilizado para exames de carga viral.

d) tampa azul: Possui citrato de sódio, que capta íons de Ca. Serve para estudos de coagulação sanguínea.

e) tampa verde: Possui Heparina, que pode ser sódica ou lítica, ambas evitam a coagulação do sangue serve para exames toxicológicos.

f) tampa cinza: Tem Fluoreto de Sódio com EDTA, serve para exames que visão dosar a glicose sérica. O EDTA possui poder anticoagulante e o Fluoreto de Sódio impede a utilização da glicose pelos elementos figurativos do sangue.

7) Quando o organismo animal se apresenta em hipóxia aguda causa que tipo de alteração hematológica para reverter o problema?

R: O organismo aumenta a produção de hemácias através da liberação de eritropoietina.

8) Os eritroblastos reticulócitos e o VCM aumentados são parâmetros importantes para a classificação da anemia quanto a resposta medular. Baseado nesse comentário do monitor Willer, explique fisiologicamente o que são reticulócitos e eritroblastos e estabeleça uma correlação fisiológica entre essas células e a resposta medular para cães e cavalos.

R: Os eritroblastos, também chamados de rubrícito, são células percursoras de eritrócitos, que possuem o citoplasma rosa ou avermelhado, podendo ser ligeiramente policromático, rodeando um núcleo picnótico (citologia: quando o núcleo apresenta cromatina extremamente condensada, podendo também indicar uma necrose tecidual) e escuro. Os eritroblastos quando excluem o núcleo passam a ser chamados de reticulócitos que são células anucleadas e possuem algumas organelas, além do arranjo da hemoglobina, no entanto a troca gasosa é por muitas das vezes deficitárias. Nos casos dos canídeos a presença de até 1% de reticulócitos não caracteriza problemas na eritropoese, enquanto que em cavalos essa células indica alterações na resposta medular. Em ambas as espécies a presença de eritroblasto pode indicar severidade na perca de sangue ou distúrbio mieloproliferativo.

9) Classifique os eritrogramas:

a) Cão, hemácias: 3.75 mm³, Hematócrito: 25,8%, Hemoglobina: 8,4 g/dL, VCM: 68,8 fl, HCM: 22,5 pg e CHCM: 32,5 g/dL. Anemia Normocítica Normocrômica. Não-regenerativa.

MOTIVO: Depressão da eritrogênese por inflamação crônica, insuficiência renal crônica ou hipoplasia medular.

b) Gato, hemácias: 4,85 mm³, Hematócrito: 18%, Hemoglobina: 6,5 g/dL, VCM: 37,1 fl, HCM: 13,4 pg e CHCM: 36,1 g/dL. Anemia Normocítica Normocrômica. Não-regenerativa.

MOTIVO: Depressão da eritrogênese por inflamação crônica, leucemia vírus felino ou hipoplasia medular.

c) Bovino, hemácias: 3,25 mm³, Hematócrito: 27%, Hemoglobina: 9,8 g/dL, VCM: 83,07 fl, HCM: 30,15 pg e CHCM: 36,29 g/dL Anemia Macrocítica Normocrômico (Hipercrômico aterfato). Pouco Responsiva, regenerativo.

MOTIVO: Deficiência de cobalto.

d) Equino, hemácias: 9,2 mm³, Hematócrito: 38%, Hemoglobina: 14 g/dL, Fib: 400 mg/dL VCM: 41,30 fl, HCM: 15,21 pg e CHCM: 36,84 g/dL Sem anemia. Normocrômico (Hipercrômico por artefato).

MOTIVO: Possível hemólise ou lipemia que mascaram o resultado.

Observação: Há no bovino e no equino, um CHCM alto, o que índica hipercrômia dos eritrócitos, isso é considerado um artefato pois, o que confere cor a estas células é o composto heme que se liga ao um átomo de ferro, sendo fisiologicamente impossível o eritrócito produzir mais hemoglobina no seu interior, então o CHCM maior que nível máximo de referência é fisiologicamente impossível, então podemos considerar que em ambos casos há um Hb livre que contribui para alterações na espectrofotometria (MEYER, 1995). Ravel (1997) além da teoria de Hb livre justifica que pode estar acontecendo um esferocitose (anemia microcítica hipercrômica hereditária, em que as hemácias se apresentam pequenas e hipercoradas), lipemias graves, aglutininas (glicoproteínas sanguínea produzidas pelo aglutinogênio que é responsável pela fenotipagem sanguínea) e em casos de fumantes inveterados (humanos).

10) As policitemias é caracterizada quando os valores hematimétricos estão acima do normal. Quais tipos de policitemias existentes e quais suas principais causas?

Policitemia Absoluta: Aumento do número total de células, esta eritrocitose pode ser ocasionada há uma deficiência da saturação de O2 (devido a pressão atmosférica ou defeitos na ventilação pulmonar), transtornos circulatórios e em recém nascidos.

Policitemia transitória: Redistribuição eritrocitária na circulação (contração do baço) causadas por exercícios, diminuição do oxigênio, emoção e hemorragias agudas.

Policetemia relativa: É causada pela hemoconcentração, devido a ingestão diminuídas de líquido, perdas de água (desidratação), vômitos, diarréia, equinos que apresentem cólicas e tétano e em casos de choque.

5º Estudo Dirigido - FALTOSOS

Este estudo dirigido é para os alunos que não foram a monitoria teórica, onde foi proposto três resultados laboratoriais, para treinar a classificação dos eritrogramas e leucogrmas, no valor de 5 pontos.

Para os alunos que não poderão estar presentes é dada a oportunidade de resolução do seguinte caso clínico:

O Prof.. Rodrigo Supranzetti atendeu uma cadela, chamada Babi, que pesava 6 Kg, sendo da raça fox paulistinha, com 168 meses. Na anamnese o paciente não estava se alimentando em um período de 2 a 3 dias, tinha tomado dipirona e não apresentou nem vômito e diarréia. Sua alimentação é composta por comida e ração, a vacinação está em dia e a vermifugação foi realizada a 4 meses. Babi mora com mais dois animais que não apresentaram nenhuma sintomatologia.

Ex. clínico GERAL: Est. nutricional – bom / comportamento – dócil / T.P.C. - 2´´/ Mucosas e linfonodos NDN.

Ex. clínico ESPECIAL:

Digestivo: hiporexia, sensibilidade dolorosa e presença de estrutura sólida desde região até porção caudal abdominal.

Cardíaco: auscultação com sopro, especialmente em relação a mitral, onde se percebe áreas de auscultação cardíaca ampliada.

Diagnóstico: Cardiopatia valvular e piometra

Obs.: A piometra é devido a solicitação da ultraonografia que revelou presença de estrutura com radiopacidade líquido em abdômen caudal, tal estrutura contribui para deslocamento cranial das alças intestinais, sendo estas imagens sugestivas de coleção fluídica intra-uterina ou tumor abdominal.

HEMOGRAMA

Valores de referência

Hemácias 5,06 mi/mm3 5,5 – 8,5

Hemoglobina 10,3 g% 12 – 18

Hematócrito 32,6% 37 – 55

Prot. Plasmática 9,1 g/dL 6,0 – 8,0

VCM 64,43 fl 60 - 77

CHCM 31,60% 32 – 36

HCM 20,36 pg 19,5 – 24,5

Leucócitos Totais 38200/mm3 6000 – 17000

Bastonetes 4% 1528,00 /mm3 0 – 300

Segmentados 75% 28650,00 /mm3 3000 – 11500

Linfócitos 19% 7258,00 /mm3 1000 – 4800

Monócitos 2% 764,00 /mm3 150 – 1350

BIOQUÍMICA

Uréia 64,4 mg/dL 11 – 60

Creatinina 1,21 mg/dL 0,5 – 1,5

ALT 24,3 U/L 4 – 66

ALP 197 U/L 0 – 88

GLICOSE 147 mg/dL 70 – 115

COLESTEROL TOTAL 273 mg/dL 140 – 210

RESPONDA:

1) Classifique o hemograma completamente. (2 pts.)

2) Baseado nas alterações do leucograma, relacionando com o diagnóstico por imagem, as suspeitas clínicas estão corretas. (1 pts.)

3) Há alterações bioquímicas, quais? E o que esses exames contribuiem para construção do diagnóstico clínico? (1 pts.)

4) É correto afirmar que este animal está com alguma alteração hepática crônica devido ao ALP aumentado em relação ao ALT. Justifique sua resposta. (1pts)

ENTREGA 28 de MAIO de 2010.

20 de abr. de 2010

Hemostasia - exercícios

ENTREGA: 27 Abril de 2010 – Monitoria Teórica

1) (UNIUBE – DLab2009) Na Medicina Veterinária normalmente se observa o uso de vitamina K em qualquer processo hemorrágico, por exemplo intoxicação por rodenticidas. Esse uso é correto? Quando deveríamos realmente aplicar vitamina K? Em qual situação? Qual(is) exames(s) laboratorial(is) deveria(m) estar alterado(s) que justifica o uso de vitamina K? Sabe-se que existem alguns fatores da cascata de coagulação que são realmente vitamina K dependentes, como por exemplo: II, VII e X.

2) (UNIUBE – DLab2009) Um colega veterinário tem dúvida de quando usar plasma total e/ou subprodutos. Como você explicaria para ele sobre a importância de utilizar plasma total e/ou seus subprodutos. Cite situações clínicas que poderiam ser utilizados plasma total e seus subprodutos e explique como podemos obter e conserva-los.

3) (UNIUBE – DLab2009) Suponha que um animal tenha deficiência na via primária da cascata de coagulação, especificamente no fator de Von Willebrand (FvW). Este fator é responsável pela intermediação entre o colágeno sub endotelial e as plaquetas, ou seja o FvW se liga a receptores na membrana de plaqueta mudando sua conformação e consequentemente secreção de substâncias vasoativas e agregantes. Essas substâncias são importantes na manutenção da vasoconstrição e amplificação da adesão e agressão plaquetária. Baseado nesse comentário qual subproduto você aplicaria nesse animal para repor o FvW. Explique como esse produto é obtido e armazenado.

4) Há algo falso nesse texto, o que é? Na CID, que é a coagulação intravascular disseminada, são consumidas quantidades maciças de fatores da coagulação, plaquetas e fibrinogênio. Quando o animal apresenta, tempo de sangria normal, plaquetas normais, protrombina aumentado e TTPA aumentado ele irá apresentar problemas nas VInst. e VExt. Conserta as corretas!

5) Explique o que prova maior e prova menor. Determine nestes testes laboratoriais, qual as recomendações dos subprodutos sanguíneos em relação a estes testes.

“NÃO ENTREGAR FORA DO PRAZO!”

HEMODERIVADOS - Hemominas

Pessoal,

Esse encarte foi idealizado pela Hemominas – MG, o interessante é que o sangue total pode ser beneficiado de várias formas e atender a necessidades específicas de cada paciente.

hem

ATIVIDADE PROPOSTA:

1) Descreva o processo de beneficiamento do sangue distinguindo cada técnica empregada para obtenção de cada hemoderivado.

2) Cada hemoderivado é recomendado para um tipo de problema específico, então determine quais as alterações clínicas e laboratoriais que possa utilizar terapeuticamente cada hemoderivado.

ENTREGA: 28 Abril de 2010 – Monitoria Prática

17 de abr. de 2010

Vídeo sobre a coagulação sanguínea

Pessoal, olha só que interessante esse vídeo sobre a coagulção feito pelos autores Paulo César Naoum e Alia F. M. Naoum e animação por Birdo Studio

Coagulação do sangue - Academia de Ciência

Contagem diferencial de Leucócitos

A imagem abaixo traz os principais personagens da atividade leucocitária. É importante ressaltar que os linfócitos não podem ser diferenciados em T ou B no esfregaço. Macrófagos não são encontrados na circulação, pois nela eles são Monócitos. Os neutrófilos podem apresentrar núcleo fragmentado, sendo denominados hipersegmentados.

FONTE: http://www.sobiologia.com.br

ENTÃO PESSOAL, NESTA IMAGEM A UM ERRO, QUAL SERÁ? NA MONITORIA (30/03) LEVEM A RESPOSTA!!!!!!

NORMAS DO H119 – Laboratório UNIUBE

Para utilização do Laboratório do Bloco H nos horários de monitoria, a UNIUBE exige que os alunos se portem como estivessem indo para aula, a paramentação exigida é JALECO, CALÇA COMPRIDA OU SAIA COMPRIDA (Religiosos Protestantes), SAPATO FECHADO.

"ENTÃO PESSOAL COLABOREM COM O MONITOR, FREQUENTEM A MONITORIA COM UNIFORME ESPECIFICADO, SENÃO RESERVO-ME NO DIREITO DE PEDIR LICENÇA DAQUELES QUE NÃO SEGUEM AS REGRAS DA UNIVERSIDADE!"

Esquematização sobre as células produzidas na Medula Osséa

Instrução Normativa nº2

Leucograma: análise da porção branca do sangue (leucócitos)

a) Contagem de leucócitos totais

Diluir sangue 1:20 em Ácido Acético 4%

Contar na Câmara de Neubauer nos quadrantes A, depois multiplicar por 50.

b) Diferencia dos leucócitos

Realiza esfregaço em lâmina e colorir em método panótico rápido

1) Azul claro – 10 vezes

2) Vermelho – 10 vezes

3) Azul escuro – 10 vezes

Lavar a lâmina suavemente, secar em temperatura ambiente e contar 100 células.

Células Bracas

Quantidade em 100

Mielócito
Metamielócito
Bastonete
Segmentado - Neutrófilo
Monócito
Basófilo
Eosinófilo
Mastócito
Linfócito

2º Estudo Dirigido

O 2º ESTUDO DIRIGIDO - GRANULÓCITOS é para ser entregue no dia 06/04/2010. Sem prorrogação do prazo.

1) Descreva a granulocitopoeses.

2) Quais os fatores que influenciam na produção e liberação de granulócitos já que em condições normais, a produção e a liberação é igual a utilização.

3) Descreva a função de cada granulócito: a) Neutróflo b) Eosinófilo c) Basófilo d) Masócito

4) Descreva a função dos linfócitos e granulócito especial: a) linfócito b) monócito

5) Verdadeiro ou falso, sendo que as falsas merecem ser justificadas. Assunto: Linfócitos e Monócitos

( ) A linfopoese nos órgãos linfóides secundários (baço, linfonodos, timo e tecidos linfóifdes associados ao intestino) dependem de uma estimulação antigênica prévia.

( ) O monócito migra para o tecido e se transforma em um neutófilo tecidual, quando há estimulação antigênca ele se transforma em macrófago fixo.

( ) O timo e a Bursa de Fabricius direcionam a funçao específica de linfócitos T e B, respectivamente, que se originam na médula óssea durante a vida fetal.

( ) Os monócitos surgem de células pluripotentes que os linfócits, no entanto estão distribuídos nos reservatórios sanguíneos da mesma forma que os neutrófilos.

( ) Os linfócios estao em constante reicirculação, ou seja, ocorrem a uma taxa relativamente constantes, de forma que o número de linfócitos que entram e deixam o sangue é aproximadamente igual, isso em um indivíduo saudável.

( ) O período de vida de um linfócito varia de alguns dias a meses ou até mesmo anos.

( ) Os tipos de linfócitos T e B são distinguivéis no sangue, sendo que T são mais rosados que os B quando utilizado a coloração Azul de Metileno para realização do esfregaço sanguíneo.

6) Em atendimento na clínica Animal Church na Universeidade do Minesota, especializada em felinos, um gato deu entrada ambulatorial com suspeita de atropelamento, ao realizar atendimento emergencial, o trainee torceu, sem querer o membro pélvico esquerdo do bichano que estava com suspeita de trauma. Baseado no histórico e relato pelo trainee quais os provavéis achados leucocitários você "clínico" espera encontrar já que o animal não apresentou febre e desidratação. Justifique sua resposta.

7) Sobre a influência dos corticosteróides sobre a resposta leucocitária, some as questões verdadeiras e justifique as falsas.

(22) Os corticosteróides (endogenos e exogenos) quando apresenam em concentração sérica aumentada, causam alterações na resposta dos leucócitos caracterizada por neutrofilia, linfopenia, monocitose e eosinopenia.

(50) Os corticosteróides causam demarginalização dos bastonetes que amadurecem e se transformam em segmentados, resultando em um aumento futuro dos neutófilos.

(120) Após cerca de 6h, a resposta leucocitária frente ao estresse (corticóides), sendo causa comum dessa alteração.

(10) Ansiedade e esforço físico podem causar resposta leucocitária semelhante ao estresse, sendo melhor visualizado em cães e gatos. Equinos e bovinos normalmente não demonstram alteração monocitária, apesar dos ruminantes nesse casos apresentarem monocitopenia.

(87,5) Em granjas suinículas e aviárias, o estresse pode influenciar no aparecimento de doenças virais, principalmente, pois nesta resposta leucocitária há um quadro de linfopenia, que alteram a circulação linfática.

SOMA DOS RESULTADOS: ________.

Gabarito Hematológico

De acordo com esse gabarito podemos diferenciar as células na contagem diferencial dos leucócitos totais!

Frequência nas monitorias

Em relação a frequência das monitorias é necessária a presença uma vez por semana.

Os exercícios devem ser entregues impreterivelmente na data estipulada.

NÃO SERÃO ACEITOS EXERCÍCIOS FORA DO PRAZO.

Então fiquem atentos e boa monitoria.

Abraços, Nathan Cruz.:

O que são instruções normativas?

As Instruções Normativas são diretrizes padrões para realização dos exames laboratoriais e devem ser seguidas nas monitorias de Diag. Laboratorial.

Instrução Normativa nº1

Eritrograma: análise das células vermelhas presentes no sangue.

I. Confecção do hematócrito (%)

II. Contagem das hemácias (X106/μL)

III. Dosagem de hemoglobina (g/dL)

I. Hematócrito (%)

Sangue c/ anticoagulante, Tubo capilar, Lamparina ou massa escolar.

a) Homogenizar o sangue no tubo de ensaio, é importante realizar este processo lentamente para não gerar ruptura das hemácias.

b) Colocar o tubo capilar em contato com sangue do tubo de ensaio, que entrará por capilaridade, estabelecer um nível até 2/3 do tubo capilar.

c) Limpar o tubo capilar por fora, e selar a parte sem sangue com a chama amarela da lamparina, ou utilizar massa escolar para vedar o tubo capilar. Quando realizada selagem com fogo, atentar para os seguintes cuidados:

c1) não deixar a ponta selada torta, pois influenciará negativamente no valor do hematócrito;

c2) não aquecer o tubo ao ponto de queimar o sangue, pois haverá ruptura das hemácias, influenciando diretamente no nível do hematócrito.

d) Levar para centrifugação pelo tempo de 5 minutos. Atentar para:

d1) selar bem o t. capilar para evitar vazamentos no aparelho;

d2) não forçar a tampa da centrífuga para não quebrar os tubos.

e) Após o processo de centrifugação o tubo capilar se apresentará em três faixas diferentes: plasma, hemácias e leucócitos;

f) Com Cartão de Leitura de Hematócritos – CLH, realizar a leitura no diagrama, onde a linha de cima é o limite do plasma e a linha de baixo é o limiar da faixa de hemácias.

II. Hemácias (X106/μL)

Sangue c/ anticoagulante, Solução fisiológica, Pipetas Automáticas (10 μL e de 1000 μL) e Câmara de Neubauer (Hematocitrõmetro), microscópio e lamínula.

a) Diluir o sangue na solução fisiológico em 1: 200.

b) Colocar lamínula em cima dos quadrantes do hematocitrômetro.

c) Com a pipeta, colocar uma pequena alíquota da suspensão preparada, aguardar um minuto e iniciar a contagem.

d) Contagem é realizada da seguinte forma:

d1) Na objetiva de 10x, focalizar o quadrante C e realizar contagem na diagonal. No quadrante (c) escolher dois lados, para realizar contagem, sempre imaginando um formato de “L”, desta forma evita-se a recontagem de lados semelhantes.

Fig. 1 Diagrama de Neubauer

d2) No final soma-se todas as contagens dos 5 quadrados e multiplica-se este valor por 10.000.

III. Hemoglobina (g/dL)

Sangue c/ anticoagulante, kit enzimático para determinação de hemoglobina, espectrofotômetro.

Branco Padrão Teste

2500 μL RTH

2500 μL Padrão

10 μL Amostra de sangue

2490 μL RTH

Realizar leitura no espectrofotômetro e realizar a regra de três para quantidade de hemoglobina do padrão.

Quanto ao uso do espectrofotômetro:

a) ranhura da cubeta para o feixe de luz;

b) colocar o espectrofotômetro em absorbância (Abs);

c) zerar Abs e completar em 100 para transmitância;

d) limpar a cubeta antes da leitura para remoção das digitais

e) colocar o comprimento de ondas em 530 λ.

Bibliografia da Matéria

Atenção Alunos, segue a Bibliografia da matéria de Diagnóstico Laboratorial para complementação de estudo:

MEYER, D. J. et al. Medicina de Laboratório Veterinária: Interpretação e Diagnóstico. São Paulo: ROCA, 1995. (UNIUBE 636.0896075 M575m).

RAVEL, Richard. Laboratório Clínico: aplicações clínicas dos dados laboratoriais. Rio de Janeiro: Guanabara Koogan, 1997. (UNIUBE 616.0756 R196l).

1º Exercício teórico

ATENÇÃO ALUNOS, ESTE ESTUDO DIRIGIDO É PARA SER ENTREGUE NO DIA 30/03/2010, NA MONITORIA TEÓRICA.

1) Podemos descobrir os valores de Hemoglobina e Hemácias à partir do Hematócrito dividindo por 3 e por 6, respectivamente. Porque isso não é aconselhável?

2) O que é hematócrito e como ele é dividido?

3) Qual a influência das catecolaminas nos aumentos dos valores de hematócrito e hemoglobina?

4) Qual é o fator sérico para produção de hemácias no sangue?

5) Defina:

a) reticulócitos

b) policitemia

c) anisocitose

d) policromasia

6) Para cada tipo de exame utilizamos um tipo de tubo que tem tampa e conteúdo diferentes, então determine o uso e conteúdo de cada tubo:

a) tampa amarela

b) tampa vermelha

c) tampa roxa

d) tampa azul

e) tampa verde

f) tampa cinza

7) Quando o organismo animal se apresenta em hipóxia aguda causa que tipo de alteração hematológica para reverter o problema?

8) Os eritroblastos reticulócitos e o VCM aumentados são parâmetros importantes para a classificação da anemia quanto a resposta medular. Baseado nesse comentário do monitor Willer, explique fisiologicamente o que são reticulócitos e eritroblastos e estabeleça uma correlação fisiológica entre essas células e a respota medular para cães e cavalos.

9) Classifique os eritrogramas:

a) Cão, hemácias: 3.75 mm³, Hematócrito: 25,8%, Hemoglobina: 8,4 g/dL, VCM: ______fl, HCM: _____pg e CHCM: _____g/dL

b) Gato, hemácias: 4,85 mm³, Hematócrito: 18%, Hemoglobina: 6,5 g/dL, VCM: ______fl, HCM: _____pg e CHCM: _____g/dL

c) Bovino, hemácias: 3,25 mm³, Hematócrito: 27%, Hemoglobina: 9,8 g/dL, VCM: ______fl, HCM: _____pg e CHCM: _____g/dL

d) Equino, hemácias: 9,2 mm³, Hematócrito: 38%, Hemoglobina: 14 g/dL, Fib: 400 mg/dL VCM: ______fl, HCM: _____pg e CHCM: _____g/dL

10) As policitemias é caracterizada quando os valores hematimétricos estão acima do normal. Quais tipos de policitemias existentes e quais suas principais causas?

Horário da Monitoria

Pessoal,

Fique atentos aos horários da Monitoria, que acontecerão na Universidade de Uberaba - UNIUBE:

Terça - Bloco P - Sala 206 - 18:30 às 22:30 - Conteúdo Teórico

Quarta - Bloco H - Sala 119 - 20:30 às 22:30 - Conteúdo Prático

Observação: Levar jaleco para as monitorias práticas.

É necessário ter uma presença por semana na monitoria.

Abraços,

Monitor.